Caratteristiche e ottenimento di anticorpi monolconali, tecniche immunoenzimatiche, descrizione delle caratteristiche del citofluorimetro e sue applicazioni per lo studio delle funzioni cellulari, metodiche di laboratorio per le separazioni cellulari, metodiche di transfezione cellulare (transiente e stabile), modelli animali di patologia.
Gli studenti avranno a disposizione una copia del materiale utilizzato per le lezioni.
Obiettivi Formativi
Al termine di questo corso lo studente avrà appreso specifiche conoscenze nei seguenti ambiti: anticorpi monoclonali, tecniche immunoenzimatiche, analisi citofluorimetrica e sue applicazioni, tecniche di separazioni cellulari, metodiche di transfezione cellulare, modelli animali di patologia.
Prerequisiti
Conoscenze di immunologia di base
Metodi Didattici
Lezioni frontali e pratiche con esperienza di laboratorio.
Altre Informazioni
Per ogni informazione e per il ricevimento degli studenti è necessario fissare un appuntamento contattando per email i docenti del corso (francesco.annunziato@unifi.it, laura.maggi@unfi.it)
Modalità di verifica apprendimento
La verifica dell'apprendimento è effettuata mediante una prova orale mirata a verificare l'acquisizione delle conoscenze previste dal programma del corso. L'esame orale consiste in 2-3 domande relative agli argomenti del programma e al materiale didattico presente nella piattaforma Moodle. La valutazione finale verrà fatta anche in base alla chiarezza dell'esposizione, alla capacità di collegamento e alla capacità di comunicazione dello studente e terrà conto dell’appropriatezza di linguaggio.
Programma del corso
Anticorpi monoclonali: allestimento ed applicazioni; Tecniche immunoenzimatiche e radioimmunologiche; Aspetti generali della citofluorimetria e applicazioni; Citofluorimetro: tipizzazione e citochine su singola cellula e solubili; Citofluorimetro: studio della risposta T antigene specifica; Citofluorimetro: studio della proliferazione cellulare; Tecniche citofluorimetriche avanzate: amplificazione dei segnali in fluorescenza; studio delle funzioni cellulari (side population, senescenza cellulare); Citofluorimetro sorting; Separazioni cellulari: rosetting+MACS+panning; Transfezioni: modelli di transfezione transiente (nucleofezione, agenti inducenti permeabilità di membrana etc); Infezioni: utilizzo di vettori virali (lentivirus, adenovirus etc); Modelli animali (topi ko, transgenici etc.); Modelli animali di patologie (patologie autoimmuni; patologie allergiche); Modelli animali di patologie (tumori)